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猪瘟疫苗生产工艺资料综述

时间:2009-08-21    点击: 次    来源:北京清大天一    作者:阳光畜牧网 - 小 + 大

一、细胞培养
1、制苗用细胞
牛睾丸细胞或羊肾细胞。
2、生长培养液
目前的细胞培养液为乳汉(欧)液,或MEM+10%新生牛血清+1%双抗(青/链霉素),pH7.0~7.2左右。
3、维持液
目前的维持液为乳汉(欧)液,或MEM+2~5%新生牛血清+1%双抗(青/链霉素),pH7.4~7.6。
4、细胞生长良好的几个注意事项
1)制苗用细胞应选用非猪瘟疫区,无口蹄疫、粘膜病等传染病地区的1~4日龄健康小公牛或10日龄以内的健康羔羊。其家H健康生长的
2)培养基和血清的质量可靠、稳定。应确保无外源病毒、支原体、细菌等污染,无牛病毒性腹泻病毒(BVDV)及其抗体。用于生产猪瘟细胞苗的牛血清都要事先检测有无BVDV中和抗体的存在。
3)制备原代牛睾丸细胞时,防止细胞消化过度。
4)合适、营养丰富的细胞培养基。丰富的营养成分对细胞的生长、带毒状态维持和毒价的提高有直接影响。
5)转瓶的洗涤应遵循严格的清洗程序。转瓶洗涤不干净,容易导致细胞不贴壁生长。
二、 病毒感染、维持和收获
生产用毒种有脾毒和细胞毒,脾毒是用选择定型热反应兔脾脏冷冻或冻干保存制备的;细胞毒是将用新鲜脾毒制成0.3%~0.5%的病毒悬液接种生长良好的牛睾丸细胞或羊肾单层细胞,取二收、三收的细胞培养液作为生产用毒种。脾毒应选择兔体反应在36小时之前,同时防止脾毒采集过程的污染。
该病毒不产生细胞病变效应(CPE),可连续多次收液。取已形成良好单层的牛睾丸细胞(或羊肾细胞),弃去培养液,接种含3%~5%细胞毒种或0.2%~0.3%脾毒种的维持液。接毒后4或5日第一次收获换液,以后每4-6日收获换液1次,可连续12~15收左右,有的厂家可收更多。一般来说,12~15收前的毒价合格率高,疫苗质量好。接毒时,细胞生长状态的好坏影响细胞产毒。也可对细胞带毒分散,分散比率1:4左右,可增加收次和产量。
将检验合格的病毒培养液和5%蔗糖脱脂牛奶稳定剂按一定比例混合,分装,进行冻干。
三、病毒特征
1、猪瘟病毒(HCV)感染细胞超薄切片的电子显微镜观察表明,该病毒颗粒在膜结合的胞浆内空胞中装配并成熟,然后经胞外释放。
2、56℃处理60分钟或60℃10分钟可灭活细胞培养液中的HCV。HCV在pH5~10时稳定,pH5.2时最适宜生长,但在低于pH4或高于pH11时快速灭活。
3、猪瘟病毒的抗原性和血清学与牛粘膜/病毒性腹泻病毒(MD/BVDV)密切相关,两者同源性很高,能互相诱导一定程度的同源病毒抗体,细胞或培养液中若存在牛病毒性腹泻病毒(BVDV)及其抗体,可与猪瘟病毒发生中和反应,造成疫苗生产的失败。
四、 病毒收获液毒价不高的可能原因
如果病毒收获液毒价不高,即病毒家兔感染量(RID)较低,制成的疫苗易造成免疫失败。猪瘟疫苗生产中毒价不高的可能原因:
1)细胞培养液(乳汉液)营养不足,尤其是使用高压灭菌液,高温可使一些营养成分损失,造成细胞生长状态不良;
2)细胞培养液较多存在外源病毒,尤其是牛病毒性腹泻病毒(BVDV)会直接造成病毒滴度降低;
3)成熟释放的病毒在维持液中耐受性较差,造成病毒滴度较低;
4)病毒毒种毒力较低,并在传代过程中弱化。
旧规程要求每1 ml病毒原液含病毒≥50,000个家兔感染量(RID)方可配苗,现要求提高至每1 ml含病毒≥500,000个家兔感染量。所以,提高疫苗单位毫升病毒量是提高疫苗质量的关键,进行猪瘟疫苗生产工艺的改进或者浓缩疫苗,显得非常必要、急迫。
【附】:用不同剂量的C株苗免疫猪,证实免疫剂量与保护水平密切相关。我国猪瘟细胞苗出厂检验以5万倍稀释能致兔体热反应为合格,即每毫升原液含5万RID。规定的免疫剂量为150RID(37PD50)。剂量不足时,攻毒后不能阻止强毒在体内复制和带毒。免疫剂量提高到80~100PD50(约320~400RID),攻毒后能制止亚临床感染,所有耐过猪均不带毒。目前欧洲为消灭HC亚临床感染,多采用加大免疫剂量的方法。欧洲药典规定用C株疫苗免疫时,肌肉注射剂量为100PD50(400RID)。
五、猪瘟疫苗生产工艺改进的几点考虑
1、使用化学成分明确的细胞培养基
化学成分明确的细胞培养基一方面能提供足够的营养,供细胞生长,同时避免动物来源成分(如由水解乳蛋白)带来外源病毒(如BVDV)及其抗体的污染。
2、使用低血清细胞培养基,减少血清使用量,提高细胞维持时间
清大天一有适合细胞培养生长的低血清MEM(MD611)细胞培养基,可使血清使用量减少50%左右,减少了外源因子污染的几率;并且由于该细胞培养基营养成分较传统细胞培养基丰富,可提高细胞活力水平,增加细胞维持时的营养供给。
3、使用改良的转瓶培养细胞
使用多层转瓶培养细胞可使单位体积溶液内的细胞数量增加,一方面提高了细胞密度,病毒增殖数量较大;另一方面也对病毒液进行了浓缩,提高了病毒原液的病毒量。
4、尽量减少水解乳蛋白的批间差,防止疫苗生产过程的不稳定情况。
5、使用质量保证的牛血清
血清是牛病毒性腹泻病毒(BVDV)的主要来源,使用质量可靠、无外源病毒的血清可减少此类污染。
6、筛选、克隆较高毒力的毒种
使用营养成分丰富的细胞培养基筛选较高毒力的毒种,并用之做克隆毒种,制备具较高毒力的毒种。
7、使用病毒保护剂有资料显示,在细胞维持液中加入病毒耐热保护剂可减少无效病毒粒子的产生,提高病毒滴度。

采用微载体和生物反应器技术生产猪瘟疫苗。

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